
Se recomienda ver el video desde el inicio hasta el minuto 06:57.
En esta clase se presenta la evolución del cultivo celular desde sus primeros experimentos hasta su aplicación moderna en la biotecnología. El estudiante conocerá a los pioneros de esta disciplina, los hitos históricos más importantes y cómo estos avances permitieron desarrollar líneas celulares inmortalizadas, como la célebre HeLa.
Al finalizar, el estudiante podrá reconocer los aportes clave en el desarrollo del cultivo celular y comprender su relevancia en la investigación biomédica actual.
Corresponde al video desde el minuto 06:57 hasta 12:32.
En esta clase se explican los principales métodos para aislar células a partir de tejidos y fluidos biológicos, incluyendo técnicas como la centrifugación y la digestión enzimática. Se analiza la diferencia entre cultivos primarios y subcultivos, así como los procesos que permiten la obtención de líneas celulares inmortalizadas.
Además, se describen las fases de la curva de crecimiento (latencia, exponencial, estacionaria y senescencia) y los factores que determinan la proliferación y estabilidad de las células en cultivo.
Corresponde al video desde el minuto 12:32 hasta 17:11.
En esta clase se analizan los principales tipos de cultivos celulares utilizados en biotecnología e investigación biomédica. Se explican las diferencias entre cultivos adherentes (monocapa) y en suspensión, sus ventajas, limitaciones y los tipos de células que pueden crecer en cada sistema.
También se aborda el concepto de subcultivo o pase celular, la importancia de mantener la confluencia adecuada y las características que distinguen a las células primarias, transformadas e inmortalizadas.
Corresponde al video desde el minuto 17:11 hasta 25:42.
En esta clase se explican los principales parámetros fisicoquímicos que deben controlarse para mantener la viabilidad y proliferación de las células en cultivo. Se abordan el pH, la temperatura, la concentración de CO₂ y oxígeno, la humedad y la osmolaridad, analizando cómo cada uno de estos factores influye en el crecimiento y comportamiento celular.
El estudiante comprenderá la importancia de mantener condiciones estables dentro del incubador y cómo pequeñas variaciones pueden alterar la fisiología celular.
Corresponde al video desde el minuto 25:42 hasta el final.
En esta clase se estudia la composición química y biológica de los medios de cultivo utilizados en la propagación de células animales. Se analizan los componentes esenciales como aminoácidos, vitaminas, sales, glucosa y fuentes energéticas, así como la función del suero fetal bovino en el crecimiento y estabilidad de las líneas celulares.
Además, se revisan los tipos más comunes de medios como BME, MEM, DMEM e IMDM y los factores que determinan su elección según el tipo celular y las condiciones experimentales. El estudiante comprenderá cómo ajustar la formulación del medio para mantener la viabilidad celular y prevenir contaminaciones.
Corresponde al video desde el inicio de la Sección 2 hasta el minuto 06:58.
En esta clase se describen las áreas esenciales que conforman una sala de cultivo celular y su distribución funcional. Se analizan los espacios destinados a lavado y preparación de material, esterilización en autoclave y manipulación estéril en la sala de cultivo.
El estudiante comprenderá cómo el diseño del laboratorio influye en la prevención de contaminaciones, el flujo de trabajo y la eficiencia experimental.
Corresponde al video desde el minuto 06:58 hasta el final del video de la sección 2.
En esta clase se presentan los equipos fundamentales de una sala de cultivo celular y sus funciones principales. Se explican el uso y mantenimiento de la campana de flujo laminar, la incubadora de CO₂, el microscopio invertido, la centrífuga y otros instrumentos complementarios.
El estudiante aprenderá cómo operar cada equipo de manera segura y comprenderá su importancia en la prevención de contaminaciones y en el manejo adecuado de cultivos celulares.
En esta clase se explican los pasos y precauciones que deben tomarse antes de iniciar el trabajo dentro de una cámara de flujo laminar. Se abordan aspectos clave como la organización del área de trabajo, la desinfección del material y superficie, la preparación personal y el uso correcto del equipo de protección.
El estudiante comprenderá cómo estos hábitos iniciales son esenciales para mantener la esterilidad, evitar contaminaciones y garantizar la seguridad del operador y del cultivo.
En esta clase se describen las buenas prácticas que deben aplicarse durante la manipulación de cultivos dentro de la cámara de flujo laminar. Se analizan la correcta disposición del material, el flujo de trabajo, la secuencia de movimientos, y las acciones que se deben evitar para no comprometer la esterilidad.
El estudiante aprenderá cómo mantener un entorno limpio, prevenir contaminaciones cruzadas y optimizar la eficiencia del trabajo mientras conserva la seguridad del operador y del cultivo.
En esta clase se abordan los procedimientos esenciales que deben realizarse al finalizar el trabajo dentro de la cámara de flujo laminar. Se incluyen la limpieza y desinfección del área, la correcta eliminación de residuos biológicos y el apagado de equipos y lámparas UV.
El estudiante comprenderá cómo estas acciones finales garantizan la asepsia del entorno, prolongan la vida útil del equipo y previenen la contaminación de futuros experimentos.
En esta clase se presentan los escenarios más comunes que pueden comprometer la asepsia dentro de una sala de cultivo celular. Se analizan situaciones como derrames accidentales, contaminación de materiales, fallas en el flujo laminar y manipulación incorrecta del equipo.
El estudiante aprenderá a reconocer estos eventos, responder adecuadamente ante ellos y aplicar medidas preventivas para mantener la seguridad y el control de las condiciones de trabajo.
En esta clase se muestra el procedimiento correcto para preparar la cámara de flujo laminar antes de iniciar el trabajo. Se explican las acciones esenciales de limpieza, encendido de la lámpara UV, organización del material y verificación del flujo de aire.
El estudiante podrá observar la secuencia práctica que garantiza un entorno estéril y seguro para la manipulación de cultivos celulares.
En esta clase se presentan los distintos tipos de contaminantes que pueden afectar los cultivos celulares, incluyendo microorganismos, contaminación cruzada entre líneas celulares y agentes químicos o físicos.
El estudiante aprenderá a reconocer los signos visuales de contaminación, sus posibles causas y las consecuencias sobre la viabilidad y confiabilidad de los experimentos.
En esta clase se analizan los principales contaminantes biológicos que afectan los cultivos celulares, incluyendo bacterias, hongos, micoplasmas y virus. Se explica cómo reconocer su presencia mediante signos visibles y microscópicos, y las estrategias más efectivas para prevenirlos.
El estudiante comprenderá la importancia de las buenas prácticas de asepsia, la limpieza del material y el monitoreo continuo de los cultivos para mantener condiciones estériles y confiables.
En esta clase se abordan las medidas preventivas esenciales para evitar la contaminación en el laboratorio de cultivo celular. Se explican las precauciones relacionadas con la manipulación del material, el control del ambiente, la limpieza del equipo y la organización del área de trabajo.
El estudiante aprenderá cómo aplicar estas normas para minimizar riesgos, mantener la esterilidad y garantizar resultados reproducibles y seguros en cada procedimiento.
En esta clase se describen los principales tipos de cultivos celulares utilizados en biología y biotecnología. Se diferencian los cultivos primarios, los subcultivos y las líneas celulares continuas o inmortalizadas, analizando sus características, ventajas, limitaciones y aplicaciones más comunes.
El estudiante aprenderá a identificar cada tipo de cultivo y comprenderá en qué contextos se selecciona uno u otro, según los objetivos experimentales y la estabilidad genética de las células.
En esta clase se presentan las técnicas básicas utilizadas en el manejo y mantenimiento de cultivos celulares. Se explican los procedimientos para el cambio de medio, el subcultivo o pase de células, la tripsinización y la criopreservación.
El estudiante aprenderá la secuencia correcta de cada técnica, las precauciones para mantener la esterilidad y las recomendaciones para conservar la viabilidad celular y evitar contaminaciones.
En este video se muestra el procedimiento correcto para realizar el cambio de medio en un cultivo celular adherente. Se explican las precauciones que deben tomarse para mantener la esterilidad, los pasos para retirar el medio agotado y agregar el nuevo, así como la importancia de realizar este proceso con movimientos suaves y controlados dentro de la cámara de flujo laminar.
El estudiante podrá observar en tiempo real la técnica de mantenimiento que asegura la viabilidad celular y previene contaminaciones durante el trabajo de rutina en el laboratorio.
En este video se muestra el proceso completo de subcultivo o pase celular, enfatizando la correcta aplicación de tripsinapara desprender las células adherentes y su posterior resiembra en nuevas placas o frascos.
El estudiante observará los pasos clave para mantener la esterilidad, calcular proporciones adecuadas de tripsina y medio, y lograr una expansión celular uniforme sin afectar la viabilidad de las células.
Este procedimiento es fundamental para conservar líneas celulares activas y garantizar su crecimiento controlado a lo largo del tiempo.
En este video se explica y demuestra el método de exclusión con azul de tripán, utilizado para evaluar la viabilidad celular y calcular la concentración de células en una suspensión.
El estudiante aprenderá a realizar la mezcla correcta de células con el colorante, cargar la cámara de Neubauer y efectuar el conteo bajo el microscopio.
Se detalla la interpretación de los resultados y el cálculo de la concentración celular, diferenciando células vivas de muertas, lo que permite sembrar densidades precisas y reproducibles en experimentos de cultivo celular.
En este video se muestra el procedimiento paso a paso para la criopreservación de células y su almacenamiento seguro a largo plazo. Se explican la preparación de la suspensión celular, la adición del crioprotector (DMSO), el enfriamiento controlado y la transferencia a nitrógeno líquido.
El estudiante comprenderá cómo estos pasos garantizan la viabilidad de las líneas celulares al descongelarse y evitarán daños por formación de cristales de hielo.
Esta práctica es esencial para mantener un banco celular confiable y preservar la integridad genética de las células utilizadas en investigación biotecnológica.
¿Quieres aprender a trabajar con células como en un laboratorio profesional?
Este curso completo de Cultivo Celular Desde Cero te guiará paso a paso desde los fundamentos teóricos hasta las técnicas prácticas más utilizadas en investigación biotecnológica y biomédica moderna.
Aprenderás a comprender la historia y principios del cultivo celular, el diseño y equipamiento de una sala de cultivo, las buenas prácticas de trabajo en cámara de flujo laminar, y los métodos esenciales para mantener, subcultivar, contar y preservar líneas celulares.
Cada sección combina explicaciones claras, diapositivas descargables y videos prácticos grabados en laboratorio, para que desarrolles confianza en cada procedimiento real:
Preparación y mantenimiento del entorno estéril.
Identificación y prevención de contaminaciones.
Manejo correcto del material biológico.
Métodos de subcultivo, recuento celular y criopreservación.
Al finalizar el curso, serás capaz de comprender y ejecutar los principales procedimientos de un laboratorio de cultivo celular, aplicar buenas prácticas de bioseguridad, y fortalecer tu perfil profesional para avanzar en biotecnología, biología celular o ciencias biomédicas.
Este curso es ideal para estudiantes, técnicos y profesionales que deseen adquirir experiencia práctica y teórica en el fascinante mundo del cultivo celular. Incluye asignaciones guiadas, rúbricas y recursos descargables para practicar y comprobar tu progreso real.